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1. DNA提取
全血DNA提取为例。
1.1血液采集
采全血2mL注入已加入200μL 5%的EDTA抗凝剂的洁净试管中。
1.2 RBC裂解
上述试管中再加入4-5倍体积的RBC裂解液，充分裂解。1000r/min，10分钟。弃去上清液。将WBC扣吸入1.5mL离心管中，加入裂解液再裂解2-3次。
1.3 DNA提取
根据WBC量的多少加入如下试剂：
表1 DNA提取试剂比例表
白细胞量（μL） | ddH2O（μL） | 7.5M胍盐酸（μL） | 10mg/mLPK（μL） | 10%SDS（μL） | 总体积（μL） |
<20 | 300 | 150 | 15 | 150 | 615 |
20-35 | 400 | 175 | 20 | 175 | 770 |
35-50 | 500 | 200 | 25 | 200 | 925 |
50-65 | 600 | 225 | 30 | 225 | 1080 |
65-75 | 700 | 250 | 35 | 250 | 1235 |
76-95 | 800 | 300 | 40 | 300 | 1440 |
注：如果PK的浓度为100mg/mL，则PK的加入量是上表中的十分之一，同时ddH2O的加入量扩大一倍；如果PK的浓度是20mg/mL，则PK的加入量是上一表中的一半，同时ddH2O的加入量应增加保持总体积不变。
将离心管放入70℃水浴中，10 min，充分混匀，然后在70℃水浴中放置15min。
高速离心4 min，将上倒入洁净的试管中，弃去离心管中沉淀物。在试管中加入2-3倍体积的无水乙醇，封口，轻轻混匀至DNA絮状出现。
将提出的DNA吸入1.5mL离心管中，加入70%的乙醇洗涤，高速离心2 min，弃去上清液，重复2-3次，弃乙醇，在无菌操作台中吹干，将DNA溶于100μL ~200μL 的TE中。
2. 琼脂糖电泳及检测
用胶带将洗净、干燥的制胶板的两端封好，水平放置在工作台上；
调整好梳子的高度；
称取0.25 g琼脂糖于25 ml 1×TAE中，在微波炉中使琼脂糖颗粒完全溶解，冷却至45-50 ℃时加入0.5 ug/ml的溴化乙锭（EB）溶液或以1:10,000的比例加入GelRedTM Nucleic Acid Gel Stain，加入之后立马摇匀倒入制胶板中；
凝胶凝固后，小心拔去梳子，撕下胶带；
将电泳样品与10× loading Buffer或6× loading Buffer混合后将样品依次点入加样孔中（电泳样品 5 ul＋loading Buffer 3 ul共8 ul混匀）；
将制胶板放入电泳槽中，加入电泳液，打开电泳仪，使核酸样品向正极泳动；
电泳完成后切断电源；
取出凝胶，置于紫外透射仪上观察电泳结果，并照相记录。具体见“美国BIORAD凝胶成像基本操作流程”。